Повна стаття Вплив дієтичних добавок натуральних та ферментованих трав на ріст

Папери

  • Повна стаття
  • Цифри та дані
  • Список літератури
  • Цитати
  • Метрики
  • Ліцензування
  • Передруки та дозволи
  • PDF

Анотація

Цей експеримент був проведений для визначення впливу трав (Artemisia capillaris і Acanthopanax senticosus) у природних та ферментованих формах на показники росту, засвоюваність поживних речовин, параметри крові, якість м’яса та склад жирних кислот у свиней, що вирощують. Загалом 96 свиней [(ландрас × Йоркшир) × дюрок] із середньою початковою масою тіла (БТ) 25,46 ± 1,07 кг були випадковим чином розподілені на одну з трьох дієтичних процедур. Дієтичні процедури включали: (1) CON (базальна дієта), (2) NH (базальна дієта + 0,05% натуральних трав) і (3) FH (базальна дієта + 0,05% ферментованих трав). Свині, які харчувались раціонами NH та FH, мали більший кінцевий показник ваги, ніж ті, що годували CON (стор 2008; Салім та ін. 2013; Леві 2014). Різні трави та їх екстракти використовувались як кормові добавки через їх антиоксидантну дію, антимікробну дію та стимулюючий ефект (Ozer et al. 2007; Wei and Shibamoto 2007; Windisch et al. 2008; Yang et al. 2014; Hanczakowska et al. 2015). Попередні дослідження повідомляли, що трави та їх екстракти можуть включатись у раціони свиней для поліпшення показників росту, засвоюваності поживних речовин, імунної функції та якості м’яса (Yan et al. 2011a, 2011b; Huang et al. 2012; Yan et al. 2012a; Cheng та ін. 2017).

вплив

Припускають, що бродіння може посилити біоактивність трав (Hussain et al. 2016). Ахмед та ін. (2016) повідомили, що процес ферментації мікробів покращив поживний склад трав (граната, Гінкго білоба і солодки), але знижені антиеліментарні фактори. Jeong and Kim (2015) та Zhao et al. (2016) повідомили, що добавки ферментованих трав (Gynura procumbens, Rehmannia glutinosa і Scutellaria baicalensis) поліпшені показники росту, засвоюваність поживних речовин у свиней, що відлучаються та вирощують. Закінчуючи свиней, Ahmed et al. (2016) відзначають, що товщина заднього жиру та реакційноздатні речовини тіобарбітурової кислоти (TBARS) м’яса зменшуються, тоді як імунна функція та склад жирних кислот м’яса покращуються, коли ферментовані трави включаються в раціон.

Капіляри артемізії є традиційною травою, що використовується переважно як гепатопротекторний, знеболюючий та жарознижуючий засіб (Jang et al. 2014; Son et al. 2017). Додатково, А. капіляри може також виконувати різні функції проти запалення, раку та гепатотоксичності (Hong et al. 2004; Lee et al. 2011; Feng et al. 2013). Acanthopanax senticosus відомий як потужна загальнозміцнююча та лікарська трава, яка має імуномодулюючу, антиоксидантну та протизапальну дію (Huang et al. 2011; Kim et al. 2015). Раніше кілька досліджень це показали A. senticosus та його екстракт мають сприятливий вплив на мікробіоти кишечника, морфологію кишечника та показники росту свиней (Yin et al. 2008; Fang et al. 2009; Han et al. 2014). Однак інформація про вплив ферментованих речовин все ще обмежена A. капіляри та A. senticosus у свиней. Метою цього дослідження було оцінити вплив природних або ферментованих трав (A. capillaris і A. senticosus) щодо показників росту, загальної перетравності тракту (ATTD), показників крові, якості м’яса та складу жирних кислот у Longissimus dorsi м’язи (LM) у свиней, що вирощують фініш.

Матеріали і методи

Комітет із захисту тварин Університету Данкук (Чеонан, Чуннам, Південна Корея) схвалив протокол догляду за тваринами, що використовується в цьому експерименті.

Приготування натуральних та ферментованих трав

Листя A. capillaris і листя і коріння A. senticosus мили, сушили на повітрі та порошкували. Потім, з живленням A. capillaris і A. senticosus ретельно перемішували (1: 1, мас./мас.), щоб отримати комбінацію трав (натуральних трав). Для твердого бродіння натуральні трави змішували з Enterococcus faecium SLB 120 при 1,0 × 10 8 колонієутворюючих одиниць (КОЕ)/г. Після цього суміші замочували у дистильованій воді для підтримки концентрації вологи 40%. Потім гідратовані трави ферментували при 37 ° С. Після ферментації протягом 72 год ферментовані зразки сушили при температурі 35 ° C у придушеній повітрі (модель FC-610, Advantec, Toyo Seisakusho Co. Ltd., Токіо, Японія) протягом 3 днів і перемелювали через 0,15 сито мм. Натуральні трави містили 876,5 г/кг DM, 170,5 г/кг сирого білка, 52,0 г/кг ефірного екстракту, 2342,45 мг/кг дубильної кислоти та 4918,36 мг/кг загальних фенолів. Ферментовані трави містили 893,6 г/кг DM, 212,8 г/кг сирого білка, 57,3 г/кг ефірного екстракту, 1053,92 мг/кг дубильної кислоти та 7562,36 мг/кг загальних фенолів.

Експериментальний дизайн, тварини, житло та дієти

Загалом 96 свиней [(Ландрас × Йоркшир) × Дюрок] із середньою початковою масою тіла (БТ) 25,46 ± 1,07 кг були випадковим чином розподілені на одну з трьох дієтичних процедур з вісьмома копіями чотирьох свиней (дві підсвинки та дві кургани) ) кожен, відповідно до початкового ЧБ та статі. Дієтичні процедури включали: (1) CON (базальна дієта), (2) NH (базальна дієта + 0,05% натуральних трав) і (3) FH (базальна дієта + 0,05% ферментованих трав). Базальна дієта (табл. 1) була сформульована для задоволення або перевищення потреб у поживних речовинах, рекомендованих NRC (2012) у поживних речовинах. Експериментальні дієти годували двома фазами, включаючи фазу I (тижні 0–8) та фазу II (8-16 тижні). Протягом усього експерименту дієти пропонувались у формі їжі. Усі свині були розміщені в приміщенні, яке контролювалось навколишнім середовищем, з примусовою вентиляцією та повністю решітчастою пластиковою підлогою. Кожна ручка була обладнана поїлкою для сосків та металевою подачею. Свиням забезпечувався вільний доступ до питної води та кормів протягом усього експериментального періоду.

Опубліковано в Інтернеті:

Таблиця 1. Склад основного раціону для свиней, що вирощують фінішне покриття (на основі годування).

Ефективність росту та засвоюваність поживних речовин

Індивідуальний коефіцієнт корисного використання та споживання корму на основі загону вимірювали на початку експерименту та в кінці тижня 4, 8, 12 та 16 для розрахунку середньодобового приросту (ADG), середнього щоденного споживання корму (ADFI) та коефіцієнта приросту/корму ( Ж/Ж).

Для визначення ATTD сухої речовини (DM) азот (N), 2 г/кг оксиду хрому (Cr2O3) додавали до експериментальних дієт як неперетравлюваний маркер протягом останнього тижня цього експерименту. В кінці експерименту з кожної ручки відбирали зразки фекалій за допомогою ректального масажу. Зразки фекалій з тієї ж ручки негайно об'єднували і перемішували, після чого зразки зберігали при -20 ° C до подальшого аналізу. Зразки фекалій сушили при 60 ° C протягом 72 годин. Після цього зразки фекалій та корму були тонко подрібнені, щоб вони могли пройти через 1-мм екран для аналізу DM (метод 930.15) і N (метод 984.13), використовуючи процедури AOAC (2007). Хром аналізували за допомогою спектрофотометрії УФ-поглинання (UV-1201, Shimadzu Corp., Кіото, Японія), згідно з методикою, описаною Williams et al. (1962). Потім ATTD розраховували за такою формулою: ATTD (%) = [1 - < ( Nf × Cd )/( Nd × Cf ) >] × 1 00, де f = концентрація поживних речовин у фекаліях (% DM), d = концентрація поживних речовин у раціоні (% DM), C.d = концентрація хрому в раціоні (% DM) і C.f = концентрація хрому у фекаліях (% DM).

Параметри крові

На початку та в кінці дослідження 16 здорових свиней (дві свині на загон) були випадковим чином обрані з кожного лікування для збору зразків крові за допомогою яремної венопункції. Зразки крові збирали як у негепаринізовані пробірки (5 мл), так і у вакуумні пробірки (5 мл), що містять K3EDTA (Becton Dickinson Vacutainer Systems, Franklin Lakes, NJ), для отримання сироватки крові та цільної крові відповідно. Концентрацію білих кров'яних тілець (WBC), еритроцитів (RBC) та лімфоцитів у цільній крові визначали за допомогою автоматичного аналізатора крові (ADVIA 120, Bayer, NY). Половину зразка крові центрифугували при 3000 × g протягом 15 хв при 4 ° C для відділення сироватки. Сироватковий інсуліноподібний фактор росту I (IGF-I), фактор некрозу пухлини-α (TNF-α), інтерлейкін-1β (IL-1β) та інтерлейкін-6 (IL-6) оцінювали за допомогою комерційно доступних наборів ІФА ( Quantikine, R&D Systems, Minneapolis, MN) відповідно до інструкцій виробника. Супероксиддисмутазу (SOD), загальну антиоксидантну здатність (T-AOC), глутатіонпероксидазу (GSH-Px:) та малоновий диальдегід (MDA) у сироватці визначали за допомогою комерційних наборів (Cell Biolabs, Inc., Сан Дієго, Каліфорнія), дотримуючись інструкцій.