Знижена активність MTHFD1 у самців мишей порушує фолієво-холінзалежний метаболізм
Марта С. Польова
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Келсі С. Шилдс
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Абарінова Олена Василівна
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Малишева Ольга Василівна
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Роберт Х. Аллен
4 Кафедра медицини та відділення гематології Університету Колорадо, Центр наук про здоров'я, Денвер, Колорадо
Саллі П. Стаблер
4 Кафедра медицини та відділення гематології Університету Колорадо, Центр наук про здоров'я, Денвер, Колорадо
Джессіка А. Еш
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Барбара Дж. Штрупп
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Патрік Дж. Стовер
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Марі А. Коділь
3 Відділ харчових наук, Корнельський університет, Ітака, Нью-Йорк; і
Анотація
Вступ
Ген Mthfd1 кодує трифункціональний фермент, що метаболізує фолат, C1-тетрагідрофолат (ТГФ) 5-синтазу, який відіграє важливу роль як у синтезі нуклеотидів, так і в циклі метіоніну. Фермент C1THF-синтази [зазвичай називається метилентетрагідрофолатдегідрогеназа 1 (MTHFD1)] містить синтетазну активність, яка каталізує АТФ-залежне перетворення формату і ТГФ в 10-формилТГФ, циклогідролазну активність, яка каталізує взаємоперетворення 10-формилТГ і 5, 10-метенилТГФ та активність дегідрогенази, яка знижує 5,10-метенилТГФ до 5,10-метиленТФ (1) ( Рис. 1 ).

Робоча модель метаболічних ефектів дефіциту Mthfd1 на холіно- та фолат-опосередкований метаболізм 1-С. Продуктом гена Mthfd1 є синтаза C1THF, яка містить ферментативні дії FTHFS, MTHFC та MTHFD. "X" позначає ферментативні дії, які зменшуються на 50% у моделі миші Mthfd1 gt/+. Метаболіти в коробці - це ті, які були виміряні в цьому дослідженні: подвійна коробка вказує на те, що метаболіт вимірювали в печінці, одинарна коробка вказує, що метаболіт вимірювали в плазмі. Більш товста стрілка, процес посилений зниженою активністю MTHFD1; пунктирна стрілка, процес ослаблений зниженою активністю MTHFD1. AdoHcy, S-аденозилгомоцитеїн; АдоМет, S-аденозилметионін; 1-С, 1-вуглець; CBS, цистатіонін β-синтаза; DMG, диметилгліцин; FTHFS, 10-формилтетрагідрофолатсинтетаза; GPC, гліцерофосфохолін; Hcy, гомоцистеїн; Met, метіонін; MTHFC, метенилтетрагідрофолатциклогідролаза; MTHFD, метилентетрагідрофолатдегідрогеназа; MTHFR, 5,10-метилентетрагідрофолат-редуктаза; ПК, фосфатидилхолін; SHMT, серингідоксиметилтрансфераза; ТГФ, тетрагідрофолат.
Продукт каталізованих C1THF-синтазою реакцій, 5,10-метиленTHF, існує в точці розгалуження на шляху метаболізму фолатів. 5,10-MethyleneTHF є донором 1-вуглецю (1-C) для синтезу тимідилату de novo, або ж може бути безповоротно відновлений до 5-methylTHF за допомогою ферменту 5,10-метилентетрагідрофолат-редуктази (1). 5-MethylTHF є ключовим донором метилу для реметилування гомоцистеїну до метіоніну, реакції, яка функціонально є надлишковою з бетаїном: каталізоване перетворення гомоцистеїну метилтрансферазою гомоцистеїну в метіонін (2–4). Як фолієво-опосередкований метаболізм 1-С, так і деградація холіну можуть незалежно забезпечувати одиниці 1-С для реметилювання гомоцистеїну, і тому ці 2 шляхи дуже взаємопов'язані. Отже, зміни або стану фолатів, або холіну можуть призвести до співмірних змін стану іншого поживного речовини, як показано в декількох моделях гризунів (5–8) та дослідженнях на людях (9–11).
Основною метою цього дослідження було кількісно визначити вплив генотипу Mthfd1 gt/+ на біомаркери метаболізму холіну. Оскільки в нашому попередньому дослідженні використовувалася дієта, дефіцитна як фолієва кислота, так і холін, поточне дослідження намагалося дослідити наслідки порушення Mthdf1 на метаболізм 1-С в умовах лише харчової недостатності фолатів.
Матеріали і методи
Експериментальні миші та дієти.
Усі протоколи досліджень були схвалені Інституційним комітетом з догляду та використання тварин Корнельського університету та відповідають Керівництву NIH з догляду та використання лабораторних тварин. Досліджуваних мишей генерували шляхом схрещування самок мишей C57Bl/6 з мишами-самцями 129P2/OlaHsd Mthfd gt/+. Миші C57Bl/6 Mthfd1 gt/+ були раніше описані (12). Під час відлучення нащадків чоловіків випадковим чином призначали або дієту AIN-93G (22) (контрольна дієта, дієти), що містила 2 мг/кг фолієвої кислоти, або модифіковану дієту AIN-93G без фолієвої кислоти [дефіцит фолієвої кислоти (FD) дієта, дієти]. Всім мишам годували відповідні дієти протягом 5 тижнів після відлучення. Експериментальних мишей генотипували, як описано в інших місцях (12).
Збір тканин.
Мишей вбивали вивихом шийки матки через 12 год позбавлення їжі. Кров збирали через серцеву пункцію в пробірки, покриті гепарином. Плазму відокремлювали центрифугуванням і заморожували в рідкому азоті. Зразки печінки промивали PBS і заморожували в рідкому азоті, потім зберігали при -80 ° C перед холіновим аналізом.
Аналіз метаболітів плазми.
Загальний гомоцистеїн плазми, цистатіонін, загальний цистеїн, метіонін, серин, гліцин, α-аміномасляна кислота, N, N-диметилгліцин та N-метилгліцин аналізували за допомогою стабільної ізотопної розрідженої капілярної газової хроматографії-МС, як описано раніше (23, 24).
Аналіз метаболітів холіну в печінці.
Рідка хроматографія-МС використовувалась для вимірювання вільного холіну, бетаїну та диметилгліцину (25), а також фосфатидилхоліну, лізофосфатидилхоліну, сфінгомієліну, фосфохоліну та гліцерофосфохоліну (26) із модифікаціями, заснованими на наших приладах (11).
Статистичний аналіз.
Статистичний аналіз проводили з використанням двосторонньої ANOVA з інтересними взаємодіями, включеними в початкову модель (JMP, SAS Institute). Ефекти вважалися значущими при P ≤ 0,05.
Результати
Генотип Mthfd1gt/+ асоціюється з вищим холіном печінки, бетаїном та диметилгліцином.
Як показано в Таблиця 1, генотип Mthfd1 gt/+ був пов'язаний з більш високими концентраціями холіну, бетаїну та диметилгліцину в тканині печінки. Печінка мишей Mthfd1 gt/+ мала на 95% вищий рівень холіну (P = 0,005), а також на 50% вищий рівень диметилгліцину (P = 0,004) та бетаїну (P = 0,013) щодо мишей Mthfd1 +/+. Миші Mthfd1 gt/+ також мали на 43% нижчі концентрації гліцерофосфохоліну в печінці (P = 0,002), ніж миші Mthfd1 +/+ (табл. 1). Примітно, що дієта FD не порушувала метаболіти холіну печінки ні у мишей Mthfd1 +/+, ні у Mthfd1 gt/+, а також не виявляла ніяких взаємодій ген-дієта (P> 0,10) (Таблиця 1).
ТАБЛИЦЯ 1
Метаболіти печінкового холіну у мишей +/+ gt/+ після 5 тижнів споживання контрольної або FD дієти 1
| +/+ | gt /+ | P значення ефекту | ||||||
| Метаболіт | Контроль | FD | Всі | Контроль | FD | Всі | Дієта | Генотип |
| n | 10 | 10 | 20 | 10 | 10 | 20 | ||
| Холін, нмоль/р | 346 ± 273 | 248 ± 189 | 299 ± 236 | 621 ± 195 | 552 ± 289 | 585 ± 245 | росіяни | 0,005 |
| Бетаїн, нмоль/г | 418 ± 202 | 331 ± 180 | 376 ± 192 | 618 ± 138 | 563 ± 262 | 589 ± 209 | росіяни | 0,013 |
| Диметилгліцин, нмоль/г | 38 ± 13 | 38 ± 12 | 38 ± 13 | 54 ± 14 | 54 ± 15 | 54 ± 12 | росіяни | 0,004 |
| Гліцерофосфохолін, нмоль/г | 173 ± 77 | 225 ± 137 | 198 ± 110 | 99 ± 22 | 125 ± 27 | 113 ± 28 | росіяни | 0,002 |
| Фосфохолін, нмоль/г | 409 ± 215 | 425 ± 287 | 417 ± 245 | 409 ± 176 | 268 ± 87 | 335 ± 151 | росіяни | росіяни |
| Фосфатидилхолін, мкмоль/г | 17,2 ± 2,75 | 17,1 ± 2,22 | 17,1 ± 2,44 | 17,2 ± 1,87 | 17,5 ± 0,97 | 17,4 ± 1,43 | росіяни | росіяни |
| Сфінгомієлін, нмоль/г | 567 ± 178 | 626 ± 151 | 595 ± 164 | 738 ± 125 | 657 ± 175 | 695 ± 155 | росіяни | 0,05 |
| Лізофосфатидилхолін, нмоль/г | 506 ± 152 | 498 ± 142 | 502 ± 144 | 523 ± 118 | 570 ± 112 | 548 ± 114 | росіяни | росіяни |