Повна стаття Вплив добавок протеази на дієти з низьким вмістом білка та енергії на ріст

  • Завантажити цитату
  • https://doi.org/10.1080/1828051X.2018.1557019
  • CrossMark

Папери

  • Повна стаття
  • Цифри та дані
  • Список літератури
  • Цитати
  • Метрики
  • Ліцензування
  • Передруки та дозволи
  • PDF

Анотація

Добавки протеази не мають конкретної допомоги для бройлерів, які перебувають під нагріванням.

вплив

Годування дієти з низьким рівнем СР та/або МЕ не є стресом для курчат-бройлерів.

Вступ

Матеріали і методи

Ферментні композиції та активність

Протеаза, використана в цьому експерименті, була очищеною мікробною протеазою (Cibenza DP100; Novus International Inc., St. Charles, MO). Фермент - це лужна серинова ендопептидазна протеаза, отримана з Bacillus licheniformis з протеазною активністю 600 000 одиниць/г. Рекомендований коефіцієнт включення виробником становить 300 одиниць/г корму. Активність протеази визначали, використовуючи метод, описаний Jin et al. (2000).

Птахи та управління

Це дослідження було проведено, дотримуючись керівних принципів дослідницької політики з етики тварин, Університет Путра, Малайзія. Всього з місцевого комерційного інкубатора було придбано 350 одноденних курчат-бройлерів Кобб. Крила пташенят прив'язували, зважували по прибуттю і випадковим чином розподіляли групами від 5 до 70 клітин у 3-стомлених батарейних клітинах (60 × 60 × 45 см, довжина × ширина × висота) з підлогою з дротяної сітки. Клітки розміщувались у двох повністю однакових камерах з регульованою температурою (9,1 × 3,8 × 2,3 м, довжина × ширина × висота). Площа приміщення становила 0,1 м 2 на птицю. Температура навколишнього середовища на 1-й день була встановлена ​​на рівні 32 ± 1 ° C і поступово знижувалась до досягнення 23 ± 1 ° C до 21-го дня. Середня відносна вологість повітря протягом експериментального періоду становила від 61 до 87%.

Експериментальний дизайн та дієти

Експериментальна конструкція являла собою факториальне розташування 2 × 7 з двома рівнями температури (нормальним та тепловим стресом) та 7 експериментальними дієтами. Починаючи з d 1, 350 птахів (5 клітин у 5 репліках) були виділені в одну із семи експериментальних дієт, як показано нижче: (1) рекомендований-CP та рекомендований-ME (RPE, служив контрольною дієтою); (2) рекомендований CP та низький ME (PRLE); (3) рекомендований CP та низький ME з протеазою (RPLEP); (4) низький CP та рекомендований ME (LPRE); (5) низький CP і рекомендований ME з протеазою (LPREP); (6) низький CP і низький ME (LPE) та (7) низький CP та низький ME з протеазою (LPEP) (рис. 1). Дієти з низьким рівнем СР були сформульовані так, щоб вони були гранично дієтичними для харчових білків з додаванням комерційно доступних кормових сортів АА, щоб гарантувати, що загальний лізин (Lys), метіонін (Met), треонін (Thr), валін (Val) і триптофан (Trp ) рівні відповідали рекомендаціям Cobb 500 щодо поживних речовин (таблиці 1 та 2). Птахи мали вільний доступ до корму (у вигляді борошна) та води та протягом усього експерименту тримали під постійним освітленням. Групи лікування повторювали в обох камерах.

Опубліковано в Інтернеті:

Рисунок 1. Розробка експерименту та експериментальні дієти. RPE: дієта, рекомендована CP та рекомендована ME; RPLE: дієта з рекомендованим ХП та низьким рівнем МЕ; LPRE: дієта з низьким рівнем CP і рекомендованою ME; LPE: дієта з низьким рівнем CP і низьким рівнем ME; Пізніше складені дієти (крім РПЕ) розділили на дві, одна служила контролем, а інша доповнювалась ферментом, щоб служити тестовою дієтою; 1 Тепловий стрес розпочався з d 22–42 в камері B.

Рисунок 1. Розробка експерименту та експериментальні дієти. RPE: дієта, рекомендована CP та рекомендована ME; RPLE: дієта з рекомендованим ХП та низьким рівнем МЕ; LPRE: дієта з низьким рівнем CP і рекомендованою ME; LPE: дієта з низьким рівнем CP і низьким рівнем ME; Складені дієти (крім РПЕ) згодом розділили на дві, одна служила контролем, а інша доповнювалась ферментом, щоб служити тестовою дієтою; 1 Тепловий стрес розпочався з d 22–42 в камері B.

Опубліковано в Інтернеті:

Таблиця 1. Склад інгредієнтів (на основі корму) початкової та фінішної дієт.

Опубліковано в Інтернеті:

Таблиця 2. Склад поживних речовин початкової та фінішної дієт.

Термічна обробка

З 22–42 дня птахи в одній камері піддавались постійному впливу 23 ± 2 ° C (нормальної температури), тоді як птахи в іншій камері піддавались дії 34 ± 1 ° C протягом 7 годин щодня (10: 00–17: 00) (тепловий стрес). Приріст температури до 34 ° C зайняв ~ 45 ± 5 хвилин, і це була точка, записана як початок термічної обробки.

Вимірювання

Дані про масу тіла та FI (дані на основі клітки) реєстрували в день 1, 21 та 42. Коефіцієнт перетворення корму розраховували відповідно після корекції смертності. Смертність реєстрували при появі щодня. 42-го дня було випадковим чином відібрано по дві птиці в клітці (10 птахів на підгрупу з температурою харчування) і вилучено з мінімальними порушеннями серед товаришів по клітці та вбито порізом шиї за методом халяля (Farouk et al. 2014), а зразки крові знекровлені зібрані. Після відбору проб крові відібрали зразки мозку та помістили їх у 5 мл пробірку із гвинтовою кришкою та заморозили у рідкому азоті для кількісного визначення експресії щільності HSP 70 (Soleimani et al. 2012). Зразки крові центрифугували при 3000 × g при 4 ° C протягом 15 хв. Отримані зразки сироватки зберігали при -80 ° C до подальшого аналізу на глюкозу (GLU), тригліцериди (TG), креатинкіназу (CK), OVT, AGP, CPN і CORT. На 43 день відібрали по дві птиці з кожної клітки (10 птахів/підгрупа за температурою харчування) і зважили індивідуально. Птахів забивали та знешкоджували у ротаційному валу. М'ясо грудей без кісток з прикріпленою шкірою (як велика, так і незначна грудна клітка) та жир на животі видаляли та зважували.

Визначення сирого білка та амінокислот

Вміст СР у дієтах визначали згідно з процедурою AOAC (1990). Вміст АА визначали за допомогою високоефективної рідинної хроматографії, як докладно описано Awad et al. (2014).

Біохімічна кров

Концентрації біохімічних речовин у крові в сироватці крові аналізували за допомогою автоматизованого хімічного аналізатора (автоматичний аналізатор Hitachi 902; Hitachi, Токіо, Японія) з використанням комерційних тестових наборів (Roche Diagnostics, Базель, Швейцарія): TP (Кат. №: 11553836 316), TG (Кат. №: 11488872 216), GLU (Кат. №: 11447513 216) та CK (Кат. №: 12132524 216).

Фізіологічні показники стресу

Статистичний аналіз

Всі статистичні аналізи проводились із використанням програмного забезпечення Statistic Analysis System версії 9.4 (SAS Institute Inc., Cary, NC). Одностороння ANOVA була використана для аналізу даних про ефективність стартового періоду (1–21 день). Дані про ефективність росту фінішера (22–42 день) та загальні (1–42 день) періоди, APP, CORT, HSP 70, дані про сироваткові метаболіти та ознаки туші піддавались двосторонній ANOVA з використанням загальної лінійної моделі ) процедура SAS для виявлення основних наслідків дієти, температури та їх взаємодії. Коли виявилось, що взаємодія між основними ефектами є значною, проводилося порівняння в межах кожної експериментальної змінної. Порівняння середніх показників було проведено за допомогою багаторазового тесту Дункана. Статистичне значення розглядається на стор˂.05.