Вплив соку гілабуру (Viburnum opulus) на експериментально індуковану пухлину асциту Ерліха у

Ефекти гілабуру (Калина опулусна) сік на експериментально індукованій пухлині асциту Ерліха у мишей

Ділек Джейлан 1, Ахмет Аксой 2, Толга Ертекін 3, Арзу Ханім Яй 4, Мехтап Нісарі 3, Гекче Чекер Каратопрак 5, Харун Юльгер 3
1 Центр генома та стовбурових клітин, Університет Ерджієс, Кайсері, Туреччина
2 Відділ біології Школи мистецтв і наук Університету Акденіз, Анталія, Туреччина
3 Кафедра анатомії, Медичний факультет, Університет Ерджієс, Кайсері, Туреччина
4 Кафедра гістології та ембріології, Медичний факультет, Університет Ерджієс, Кайсері, Туреччина
5 Кафедра фармакогностики, Фармацевтична школа, Університет Ерджієс, Кайсері, Туреччина

Дата публікації в Інтернеті

8 березня 2018 р

Адреса для кореспонденції:
Доктор Ділек Джейлан
Центр геному та стовбурових клітин, Університет Ерджієс, Кайсері 38039
Туреччина

Джерело підтримки: Жоден, Конфлікт інтересів: Жоден

DOI: 10.4103/0973-1482.181173

Завдання: Метою дослідження було дослідити протипухлинний ефект Калина опулусна (VO) на мишах, що несуть асцитозний карцином Ерліха (EAC), які отримували різні концентрації VO.
Матеріали і методи: Для трансплантації пухлини; мишам інокулювали 1 × 10 6 клітин EAC внутрішньочеревно і потім розділяли на п'ять груп ( = 9). Через дві години після щеплення; експериментальні групи лікували щодня екстрактом VO у дозах 1000 мг/кг, 2000 мг/кг, 4000 мг/кг.
Результати: Екстракти, отримані з соку гілабуру, можуть перешкоджати впливу на ріст клітин пухлини.
Висновок: Наскільки нам відомо, це перше дослідження про в природних умовах протипухлинна активність моделі пухлини асциту VOon Ehrlich, і, отже, екстракт VO виявляв протиракову активність проти мишей, що несуть EAC.

Ключові слова: Протипухлинна активність, асцитна пухлина Ерліха, експериментальний рак, гістопатологія, Калина опулусна

Як цитувати цю статтю:
Джейлан Д, Аксой А, Ертекін Т, Яй АХ, Нісарі М, Каратопрак Г &, Ульгер Х. Ефекти гілабуру (Калина опулусна) сік на експериментально індукованій пухлині асциту Ерліха у мишей. J Can Res Ther 2018; 14: 314-20

Як цитувати цю URL-адресу:
Джейлан Д, Аксой А, Ертекін Т, Яй АХ, Нісарі М, Каратопрак Г &, Ульгер Х. Ефекти гілабуру (Калина опулусна) сік на експериментально індукованій пухлині асциту Ерліха у мишей. J Can Res Ther [серійний онлайн] 2018 [цитоване 22 грудня 2020 р .; 14: 314-20. Доступно з: https://www.cancerjournal.net/text.asp?2018/14/2/314/181173

Починаючи з трьох століть, особливо трансплантовані хімічними канцерогенами та спонтанні пухлинні моделі виходять на перший план в експериментальних дослідженнях раку. Ці моделі часто віддавали перевагу тому, що їх можна застосовувати, а також легше виробляти в дослідницьких центрах. [21] За останні 2–3 десятиліття кількість досліджень раку, які можна пересадити, зросла численні. Спочатку пухлина Ерліха була описана як спонтанна аденокарцинома молочної залози миші. Це швидко зростаюча карцинома з дуже агресивною поведінкою і може рости майже у всіх штамів мишей. [22], [23] Він використовувався як трансплантована модель пухлини для дослідження протипухлинних ефектів декількох хімічних сполук. Після внутрішньочеревного посіву клітин пухлини Ерліха асцитичний об’єм і кількість клітин різко збільшуються. [24] Метою цього дослідження було дослідити протипухлинні властивості різних концентрацій екстракту порошку соку гілабуру на обох в пробірці з використанням пухлинних клітин Ерліха і в природних умовах з використанням мишачого асциту за моделлю пухлини Ерліха.

Рослинний матеріал та приготування екстракту

Грона з фруктами VO були зібрані з Туреччини Кайсері в жовтні 2011 року. Грона з фруктами були об'єднані та упаковані в поліетиленові пакети. Плодоніжки видаляли, а плоди подрібнювали скляною паличкою. Затор центрифугували при датчику 6000 протягом 20 хв. Надосадову рідину прозорого соку розливали у скляні пляшки. Після центрифугування екстракти з плодів ліофілізували морозильною сушаркою Labconco (модель 117-A65312906; FreeZone 2.5) протягом 24 годин, а потім зберігали у пластикових флаконах при -80 ° C до аналізу. У день аналізу екстракт VO стерилізували 0,45 і 0,20 мкм фільтром, в якому стерильний фосфатний буферний сольовий розчин (PBS).

Дослідні тварини

Усі процедури на тваринах та експериментальні протоколи були схвалені Комітетом з питань етики експериментальних тварин, Університет Ерджієс, Туреччина (12/89-12/08/2012). Загалом 45 мишей Balb/c приблизно 6–8-тижневого віку із середньою масою тіла 25–30 г було заготовлено з Лабораторного відділу тварин Експериментально-клінічного дослідницького центру Університету Ерджієс і розміщено в контрольованому кондиціонуванні (25 ± 1 ° C постійна температура, 55% відносна вологість повітря, 12 год темряви/світлових циклів). Їжа та вода дозволялися ad libitum протягом періоду навчання. Мишей акліматизували в лабораторних умовах протягом 7 днів до початку експерименту.

Клітини пухлини

Тварина, що страждає на асцит Ерліха (EAC), отримана з біологічного факультету природничого факультету університету Газіантеп. EAC - це мишачий спонтанний рак молочної залози, який послужив оригінальною пухлиною, з якої був отриманий варіант асциту. Клітини пухлини підтримувались у нашій лабораторії шляхом послідовного внутрішньоочеревинного (i.p.) проходження у самців мишей Balb/c з інтервалом 7–10 днів. Клітини EAC тестували на життєздатність та забруднення за допомогою техніки виключення барвника трипанового синього. Життєздатність клітин завжди виявлялася 95% і більше. Суспензії пухлинних клітин готували в PBS. [25]

Трансплантація пухлини та графік лікування

Мишам інокулювали 1 × 106 клітин EAC (0,2 мл/миша) i.p. День імплантації пухлини був призначений як "0". Через дві години після щеплення тварин рандомізували і розподіляли на п'ять груп ( = 9). Контрольна та експериментальна групи були такими:

Група 1: Негативна контрольна група ( = 9); PBS вводили i.p. щодня протягом 10 днів
Група 2: Позитивна контрольна група ( = 9); 1 × 10 6 клітин EAC вводили i.p. і PBS вводили i.p. щодня протягом 10 днів
Група 3: = 9; 1 × 10 6 клітин EAC вводили внутрішньовенно, а потім тварин щодня обробляли екстрактом VO у дозі 25 мг (1000 мг/кг) внутрішньовенно. бути в межах 200 мкл PBS протягом 10 днів
Група 4: = 9; 1 × 10 6 клітин EAC вводили внутрішньовенно, а потім тварин щодня обробляли екстрактом VO у дозі 50 мг i.p. (2000 мг/кг) в межах 200 мкл PBS протягом 10 днів
Група 5: = 9; 1 × 10 6 клітин EAC вводили внутрішньовенно, а потім тварин щодня обробляли екстрактом VO у дозі 100 мг внутрішньовенно. (4000 мг/кг), щоб бути в межах 200 мкл PBS протягом 10 днів.

Дози були підібрані на основі попереднього дослідження, проведеного в нашій лабораторії. [19] Всіх тварин забивали через 11 днів через 24 години після останньої дози, а асцитну рідину збирали з очеревинної порожнини груп 2–5 для оцінки росту пухлини. Протипухлинні ефекти VO аналізували шляхом спостереження змін щодо добової маси тіла, кількості життєздатних і нежиттєздатних клітин пухлини в порожнині очеревини оброблених груп та контрольної групи. Після жертвопринесення тканини печінки та нирок видаляли та досліджували на біохімічні показники. Крім того, ми гістологічно дослідили тканини печінки, нирок, товстої кишки та тонкої кишки для оцінки інгібуючого дії пухлини екстракту VO.