РЕЙТИНГ СОРПЦІЙНОЇ ДІЯЛЬНОСТІ ЛІГНІНУ, ЯКИЙ ВМІСТУЄ ЕНТЕРОСОРБЕНТИ ПРОТИ МІКРООРГАНІЗМІ КОНШТОВОГО кишечника
В останні роки велика увага в медичній практиці приділяється ентеросорбентам фітогенезу, до яких належать неперетравлювані в тонкому кишечнику некрахмалисті полісахариди, такі як целюлоза, геміцелюлози, пектин, камедь, слиз і не вуглеводний лігнін [1]. Рослинні сорбенти стійкі до дії ферментів шлунку і тонкої кишки і піддаються бактеріальному бродінню в товстій кишці. Можливості волокон пов'язані з наявністю в їх молекулі гідроксильної та карбоксильної груп, що зумовлює їхні водоутримуючі, іонообмінні та адсорбційні властивості. Серед харчових волокон є лікарські засоби (наприклад, поліфепан) та біологічно активні добавки, такі як зостерин, детоксал та полісорбіт.
Ентеросорбція заснована на відомому у фізіології травлення явищі підтримання сталості середовища кишечника, суть якого полягає в тому, що незалежно від характеру споживаної їжі куранти залишаються більш-менш постійними. Ця сталість забезпечується всмоктуванням у кров і лімфу та виведенням із просвітом кишечника різних компонентів (води, електролітів, вуглеводів, жирів тощо). У рециркуляції компонентів крові та хімусу беруть участь залози шлунково-кишкового тракту, печінки, жовчних проток і підшлункової залози.
МАТЕРІАЛИ І МЕТОДИ
В якості ентеросорбентного матеріалу в даній роботі було використано активоване вугілля та гідролітичний лігнін, отриманий на основі відходів санітарних деревних рубок саксаулу. При приготуванні ентеросорбентів вихідні компоненти піддавали механічному змішуванню у співвідношенні активоване вугілля: лігнін (100: 0, 60:40, 50:50, 0: 100) відповідно.
Метою роботи було вивчення ефективності сорбції клітин Salmonella typhimorium, Proteus vulgaris та Candida sp, отриманих за допомогою ентеросорбентних матеріалів. Бактерії вирощували на м’ясному настоєному бульйоні, дріжджі в рідкому середовищі Сабуро при рН 7,0. Суспензію для іммобілізації готували в ізотонічному розчині з щільністю клітин 10 7 кл/мл. Сорбцію клітин вивчали в розчині хлориду натрію в статистичних умовах. Зразки відбирали через 24 години контакту сорбентів з мікроорганізмами і після витримки протягом 1 години визначали кількість клітин. Кількість клітин у рідині визначали шляхом висіву культивувань на середовище Ендо або Сабуро. Ефективність сорбції оцінюють на різниці концентрацій клітин у живильному середовищі до і після процесу сорбції. Співвідношення маси сорбентів становило 1-3 грами на 100 мл суспензії. Сорбенти попередньо піддавали стерилізації шляхом автоклавування тривалістю 30 хв під тиском 1,5 атм. У процесі десорбції сорбенти з клітинами, адсорбованими на них, переносять у 100 мл ізотонічного розчину, перемішують протягом 5 хвилин і висівають на середовище Ендо для визначення титру клітин [2-4].