Вплив різних пероральних доз хлориду натрію на основний кислотно-основний та мінеральний статус

Афілійований інститут сільськогосподарських та харчових наук, Групове харчування тварин, Університет Мартіна-Лютера Галле-Віттенберг, Галле (Заале), Німеччина

вплив

Кафедра філіології харчування та харчування тварин, Ростоцький університет, Росток, Німеччина

Філія Лейбніца, Інститут біології сільськогосподарських тварин, Даммерсторф, Німеччина

Група з вивчення коней, Уолтем Центр харчування домашніх тварин, Waltham-on-the-Worlds, Великобританія

Кафедра філіології харчування та харчування тварин, Ростоцький університет, Росток, Німеччина

Державне управління з питань сільського господарства, безпеки харчових продуктів та рибного господарства Мекленбург-Західна Померанія, Росток, Німеччина

Афілійований інститут фізіології та харчування тварин, Університет Людвіга-Максиміліана, Мюнхен, Мюнхен, Німеччина

  • Аннет Зейнер,
  • Крістін Романовський,
  • Андреас Вернунфт,
  • Патрісія Гарріс,
  • Ен-Марі Мюллер,
  • Карола Вовк,
  • Елен Кінзле

Цифри

Анотація

Вивчати дизайн

Після 4 тижнів адаптації до основного раціону коней хаотично спаровували і годували згідно з латинською квадратною схемою 3 х 3 (3 раціони х 3 пари кобил протягом всього 3 періодів дослідження). Три пробні дієти складали лише основну дієту (NaCl-0) та основну дієту, доповнену NaCl, або 50 (NaCl-50), або 100 (NaCl-100) г на день. NaCl давали у сипучому вигляді в два рівні їжі разом із зерновим концентратом зернових.

Дослідження включало 3 пробні періоди. Кожен період тривав 28 днів із 21 добою годування відповідною пробною дієтою (d1 – d21: NaCl-0, NaCl-50 або NaCl-100), а потім 7 днів годування без NaCl (період вимивання: d22 –d28: NaCl- 0).

Відбір проб

Коней зважували (AWE460, PAARI Wagen Erfurt, Німеччина) на початку та в кінці дослідження перед ранковою їжею. Для визначення засвоюваності застосовують індикаторний метод з 4N HCl-нерозчинною золою [39], [40], [41], як детально описано Fuchs et al. [42] було використано. Для цього вранці відбирали фекалії протягом 5 днів (d17 — d21). Фекалії брали безпосередньо з ампули прямої, ретельно перемішували і підзабір 300 г на коня на день заморожували (- 20 ° C) для подальшого аналізу.

Для кожного періоду відбирали зразки крові та сечі, коли годували лише основну дієту (d0), протягом перших 4 днів (d1, d2, d3, d4) годування досліджуваними дієтами (NaCl-0, NaCl-50 або NaCl -100), а також через 1 і 2 тижні (d8, d15) годування відповідними дієтами. У кожному випадку це робилося до ранкової їжі, яка була о 7:30 ранку. Кров відбирали шляхом пункції вени яремної вени спочатку для аналізу газів крові за допомогою гепаринізованого шприца (Monovette ®, Sarstedt AG & Co., Нюрнбрехт, Німеччина). Ректальну температуру окремого коня вимірювали одночасно. Потім збирали кров на сироватку (Monovette ®, Sarstedt AG & Co., Нюрнбрехт, Німеччина). Зразки центрифугували протягом 8 хв при 3000 x g. Зразки сечі відбирали після кількох хвилин вибивання і повільної рисі через асептичний катетер сечового міхура (Eruplast ®, Rüsch AG, Kernen, Німеччина). Плазму, сироватку та сечу негайно заморозили (- 20 ° C) для подальшого аналізу.

Вимірювання, хімічний аналіз та розрахунки

Умови навколишнього середовища.

Температуру навколишнього середовища (° C) та відносну вологість (%) у стайні реєстрували кожні 30 хвилин за допомогою автоматичної системи testo 175-H2 (Testo AG, Lenzkirch, Німеччина).

Вживання води.

Забір води кожної окремої коні автоматично визначався за допомогою лічильника витрати води, який встановлювався на кожному поїлку. Споживання води реєстрували щодня перед ранковою їжею і виражали як споживання води протягом 24 годин.

Корм і фекалії.

Вміст сухої речовини та близьких поживних речовин у зразках кормів та фекалій аналізували згідно з VDLUFA [43], визначали 4N HCl-нерозчинну золу, як описано Fuchs et al. [42]. Основні елементи у кормах та фекаліях були виявлені за допомогою таких методів, як описано раніше Stürmer [29] та Kienzle et al. [36]: Na, K, Ca методом полум’яної фотометрії (EFOX 5053, Eppendorf AG, Гамбург, Німеччина); P методом спектрофотометрії (GENESYS 10 UV, Thermo Specitronic Rochester, США); Cl через чутливий до іонів електрод (хлориметр Eppendorf, Eppendorf AG, Гамбург, Німеччина); Mg за допомогою атомно-абсорбційної спектрометрії (Перкін Елмер, Уолтем, Великобританія).

Кров.

Значення рН, напруження діоксиду вуглецю (pCO2), стандартний надлишок основи (SBE), стандартний бікарбонат (SBC) та іонізований Ca (Ca ++) визначали відкаліброваним та регульованим (відповідно до ректальної температури окремого коня) газом крові аналізатор (RAPIDLAP 348, Bayer Diagnostics, Мюнхен, Німеччина). Для регулювання була встановлена ​​стандартна температура 37 ° C. Сироватку крові аналізували за допомогою автоматизованого аналізатора Cobas Mira Plus (Roche Diagnostics, Grenzach-Wyhlen, Німеччина). Зокрема, це було зроблено фотометрично для неорганічного фосфору (Pi, з молібдатом амонію), Mg за допомогою ксилідил-синього, креатиніну з кінетичним аналізом за Жаффе, загального білка (TP) за біуретовим методом, лактату (La -) з лактат-оксидазою, Na +, K + і Cl - з чутливим до іонів електродом. Ca аналізували полум'яною фотометрією за допомогою Flapho 4 (Carl Zeiss, Єна, Німеччина).