Взаємодія між добровільним вживанням їжі, дієтичним співвідношенням вуглеводів та ліпідів та поживними речовинами

Ролі Концептуалізація, курація даних, офіційний аналіз, придбання фінансування, методологія, адміністрування проектів, ресурси, нагляд, перевірка, візуалізація, написання - оригінальний проект

дієтичним

Афіліаційна лабораторія харчування тварин, факультет ветеринарної медицини, Університет Гента, Мерелбеке, Бельгія, відділ наук про тварин, Університет Коста-Рики, Ciudad Universitaria Rodrigo Facio, Сан-Хосе, Коста-Ріка

Співпрацювали в цій роботі з: Еллен С. Діренфельд, Герт П. Дж. Янссенс

Ролі Концептуалізація, методологія, перевірка, візуалізація, написання - оригінальний проект, написання - огляд та редагування

Філія Ellen S. Dierenfeld, LLC, Сент-Луїс, штат Міссурі, Сполучені Штати Америки

Співпрацювали в цій роботі з: Еллен С. Діренфельд, Герт П. Дж. Янссенс

Ролі Концептуалізація, Формальний аналіз, Залучення фінансування, Методологія, Адміністрація проекту, Ресурси, Валідація, Візуалізація, Написання - оригінальний проект, Написання - перегляд та редагування

Афілійована лабораторія харчування тварин, факультет ветеринарної медицини, Університет Гента, Мерелбеке, Бельгія

  • Андреа Бренес-Сото,
  • Елен С. Діренфельд,
  • Герт П. Дж. Янссенс

Цифри

Анотація

Експериментальні процедури

Випробування на засвоюваність.

Акваріуми (що містять двох одностатевих тварин з однаковою вагою в кожному) були випадковим чином призначені для однієї або двох дієтичних процедур, шість повторень за одну процедуру. Кожне лікування складалося з ізоенергетичної гранульованої дієти, виготовленої в Лабораторії харчування тварин, особливо складеної з двома різними співвідношеннями вуглеводів і жирів, або 4,5: 1, або 2,1: 1, виходячи з діапазонів, зареєстрованих для жаб-биків (R. catesbeiana) [17, 21,22]. Ці співвідношення були встановлені для того, щоб змінити пропорцію дієтичного глюкогенного (GLUC) та ліпогенного (LIPO) та підтримуючи стабільний вміст білка для підтримки постійної концентрації амінокислот (табл. 1). Перед випробуванням жаб годували підтримуючою дієтою (гранули, виготовлені з тих самих інгредієнтів, що використовуються в лікувальних дієтах), і середнє споживання їжі було розраховано як базовий для цього дослідження.

Нові дієти пропонувались за 10 днів до експериментального періоду, щоб адаптувати жаб до нової їжі та “вимити” колишню дієту із травного тракту. Цей час базувався на попередніх дослідженнях, що повідомляли про швидкість проходження від 1 до 8 днів у кількох видів жаб, X. laevis (неопубліковані дані), Cyclorana alboguttata [43] та Rana perezi [44]. Після початку випробування жаб годували три рази на тиждень (о 10:00 год.) І визначали щоденний прийом, виймаючи, висушуючи та зважуючи з’їдену їжу з кожного акваріума через 40 хв [45]. На початку випробування тварин зважували за допомогою цифрової шкали (серія OHaus CS ± 1 г), а споживання їжі (FI) на метаболічну масу тіла (MBW) (г/(BW в кг) 0,75) розраховували із середнім значенням значення тварин з кожного акваріума.

Фекалії збирали щодня (за наявності) за допомогою рибної піпетки об’ємом 30 мл, поміщаючи зразок у сітчасте сіто 100 мкм для фільтрації води, а потім зберігали замороженим при -20 ° C. Наприкінці випробування зразки фекалій об'єднували для всіх груп лікування та зберігали до аналізу. Дієти, а також зразки фекалій аналізували на близький склад [46]. Коефіцієнти очевидної засвоюваності (aD) сухої речовини (DM), сирого білка (CP), жиру та золи розраховувались наступним чином:

Вміст амінокислот після знежирення [47] та мінеральних профілів [48] визначали лише в їжі.

Забір крові та аналіз.

Наприкінці випробування тварин голодували протягом 24 год, зважували та знеболювали за допомогою розчину ізофторану, змішаного з дистильованою водою та ультразвуковим гелем, що застосовували місцево у дозі 0,03 мл/г маси тіла [49]. Зразки крові (макс. 3% маси тіла) відбирали шляхом пункції серця за допомогою шприца об'ємом 1 мл та голки об'ємом 26 г, розміщених на картках Protein Saver (Whatman 903 TM, GE Healthcare, Bio-Sciences Corp., MA, USA), і зберігають замороженим при -20 ° C до аналізу. Після відбору проб тварини отримували шляхом розпилення дистильованої води на їхні тіла і залишали під спостереженням до повного відновлення протягом ± 5 год, а потім знову розміщували у відповідних акваріумах. Ацилкарнітини та амінокислотні профілі сухих плям крові визначали за допомогою тандемної мас-спектрометрії [50] в лабораторії метаболічних захворювань Університетської лікарні Гента. Ця методика широко застосовується для виявлення метаболічних порушень, біохімічно виявлених у людей (дорослих та новонароджених) як у зразках плазми, так і в цільній крові [51], а нещодавно також застосовується у дослідженнях на тваринах [45, 52].