Клінічна оцінка нового фільтра для видалення жиру під час кардіохірургії

Адріанус Дж. Де Фріз, Ю. Джон Гу, Івонн Л. Дуглас, Венді Дж. Пост, Харм Ліп, Віллем ван Еверен, Клінічна оцінка нового фільтра для видалення жиру під час кардіохірургії, Європейський журнал кардіо-торакальної хірургії, том 25, Випуск 2, лютий 2004 р., Сторінки 261–266, https://doi.org/10.1016/j.ejcts.2003.11.011

нового

Анотація

1. Вступ

Нещодавно жирові мікроемболи були продемонстровані в тканині мозку після серцево-легеневого шунтування (CPB) [1]. Вони були пов’язані з ретрансфузією всмоктувальної крові за кардіотомією [2] та пов’язані з післяопераційною нейрокогнітивною дисфункцією [3]. Тому увага знову зосереджується на несприятливих наслідках ретрансфузії кардіотомічної всмоктувальної крові під час серцевої хірургії. Крім того, роль жиру у пошкодженні органів, можливо, була недооцінена, оскільки жирові мікроемболи були продемонстровані не тільки в тканинах мозку після КЗВ, а й у легеневій тканині [4]. В експериментах на тваринах ін’єкція вільних жирних кислот (FFA), особливо олеїнової кислоти, постійно викликає розвиток гострого респіраторного дистрес-синдрому [5]. Нарешті, жирові відкладення були продемонстровані в тканинах нирок [6], а також у сечі після CPB [7].

2 Матеріал і методи

2.1 Пацієнти

Після схвалення комітетом людських досліджень та згоди пацієнтів 28 пацієнтів, запланованих на проведення АКШ, були рандомізовані до групи I: фільтрація жиру кардіотомічної крові, що всмоктується під час CPB (n = 14), або II: контрольні пацієнти без фільтрації (n = 14). Критеріями виключення були наявні захворювання легенів, церебральні судинні захворювання, цукровий діабет, екстрена операція та повторна операція. Зразки крові відбирали з променевої артерії (1) після введення анестезії, (2) в кінці операції, (3) через 3 год в реанімації та (4) вранці першого післяопераційного дня . Зі зразків крові, взятих до операції та після операції в дні 1, 2 та 6, кліренс креатиніну розраховували за формулами Кокрофта [11].

2.2 Анестезія та перфузія

Наркоз викликали та підтримували внутрішньовенною інфузією мідазоламу (0,1 мг кг -1) та суфентанілу (1,5 мкг кг -1), як описано раніше [12]. Панкуроній (0,1 мг кг -1) використовували для розслаблення м’язів. Дексаметазон (1 мг кг -1) вводили після індукції. Управління вентиляцією було спрямоване на нормокапнію протягом усієї операції та у відділенні інтенсивної терапії (ІР) з часткою кисню на вдиху 0,4, позитивним тиском на кінці видиху 6 см H 2 O та дихальним об’ємом 6–8 мл кг -1. Для антикоагуляції використовували бичачий гепарин легень (300 МО кг -1). Це моніторувалось часом активованого цілітом згортання (ACT; International Technidyne, Edison, NJ, USA) і підтримувалося на рівні ≥400 с. Після CPB гепарин нейтралізували протаміном (300 МОкг -1).

Екстракорпоральний контур складався з роликових насосів (Stöckert, Мюнхен, Німеччина), порожнистоволокнистого оксигенатора (Sarns Turbo, 3M, St Paul, MN, США) та стандартного артеріального лінійного фільтра (Affinity 38μ, Medtronic, Minneapolis, MN, USA) . Грунтування складалося з 500 мл 10% гідроксиетилового крохмалю (Haes, Fresenius, Bad Homburg, Німеччина) та 1000 мл лактатного розчину Рінгера. Потік насоса регулювали до 2,4 л м −2 на хвилину. Температура носоглотки під час CPB підтримувалася на рівні 32 ° C.

2.3 Процедура фільтрації

У групі фільтрів кардіотомічну кров відсмоктували в окремому резервуарі для кардіотомії (ATR120, Fresenius, Бад-Хомбург, Німеччина) з моменту, коли ACT становив ≥400 с. Після звільнення поперечного затиску аорти ця кардіотомічна кров пройшла під дією сили тяжіння через фільтр для видалення жиру (LipiGuard, Pall, Портсмут, Великобританія) у резервуар для кардіотомії ланцюга CPB. Після кожних 600 мл кардіотомії крові використовували новий фільтр. У контрольній групі кров для всмоктування кардіотомії збирали безпосередньо в резервуар кардіотомії ланцюга CPB з моменту, коли ACT становив ≥400 с.

В обох групах залишкову кров у екстракорпоральному контурі після CPB збирали у мішок для переливання крові та переливали пацієнту за допомогою стандартної системи переливання крові.

2.4 Вимірювання

Коли через фільтр пройшло 200 мл крові, проби відбирали одночасно до і після фільтра. З антикоагулянтної крові за допомогою ЕДТА, гематокрит, кількість тромбоцитів та загальний вміст білих кров'яних клітин визначали за допомогою електронного лічильника клітин (Cell-Dyn 610, Abbott, Санта-Клара, Каліфорнія, США). Рівні тригліцеридів визначали за допомогою біохімічного аналізу (Sigma, St Louis, MO, USA).

Для оцінки ємності фільтрів у окремих пацієнтів відбирали проби крові у чотирьох додаткових фільтрів після того, як через фільтр пройшло 50, 200 і 600 мл крові. За цими зразками вимірювали кількість тромбоцитів та загальний вміст білих кров’яних клітин та рівень тригліцеридів, як і раніше.

Крім того, для оцінки якісних ефектів фільтрації модифіковану тонкошарову хроматографію за Фольчем [13] проводили на зразках до і після фільтра та на зразку крові пацієнта до CPB, а також на зразках крові, які відбирали для оцінка потужності фільтра. Коротко кажучи, плазму екстрагували сумішшю хлороформ – метанол. Екстракт змішували з бутильованим гідрокситолуолом, щоб уникнути окислення, і після висушування розчиняли в хлороформі. На кремнеземну пластину наносили 10 мкл зразків. Цю суміш застосовували із сумішшю н-гексан-діетилетер-оцтова кислота та розробляли із сульфатом міді у фосфорній кислоті. Було виявлено п’ять смуг: ефіри холестерилу, тригліцериди, FFA, холестерин та фосфоліпіди. Для напівкількісної оцінки хроматографії смуги сканували за допомогою комп'ютера, а інтенсивності смуг призначали оцінку від 0, будучи абсолютно білим до 100, будучи абсолютно чорним. Значення, наведені в таблиці 3, є цими комп’ютеризованими показниками щільності.

Оскільки ми виявили значне збереження кількості тромбоцитів після фільтрації, включаючи значну більшу кількість післяопераційних циркулюючих тромбоцитів у фільтраційній групі, ми ретроспективно проаналізували адсорбцію фільтруючого матеріалу фактора активації тромбоцитів (PAF). Тому ми інкубували шматочки фільтруючого матеріалу по 40 мг із 0,05 мМ очищеного PAF C-18 (Sigma, Сент-Луїс, Міссурі, США), який потім додавали до свіжої плазми, багатої тромбоцитами, із здорової добровольчої крові. Агрегацію тромбоцитів порівнювали між PAF C-18 з попередньою інкубацією з фільтруючим матеріалом або без неї за допомогою оптичної агрегометрії (Chronolog, Havertown, PA, USA).

2.5 Статистика

Розмір вибірки для цього дослідження був розрахований на припущенні, що жировий фільтр видалить щонайменше 50% жиру з хірургічної кардіотомії. Отже, знадобиться дванадцять пацієнтів з потужністю 0,8 та α 0,05. Усі дані представлені некорегованими для гемодилюції та виражаються як середнє значення ± стандартна помилка, якщо не вказано інше. Для порівняння поодиноких даних між групами був використаний двосторонній t-тест Стьюдента. Для порівняння вимірювань до і після фільтра використовували парний t-тест Стьюдента. Двосторонній дисперсійний аналіз (ANOVA) для повторних вимірювань використовувався для визначення ефекту часу, групи та взаємодії в різні моменти часу. У разі багатовиборової сферичності були зроблені корекції Теплиці-Гейзера (ε). Щоб забезпечити багаторазове порівняння, результати виправляли за допомогою методу найменших квадратних різниць. Значення Р ≤ 0,05 вважали статистично значущим.